jueves, 19 de marzo de 2015

Electroforesis (29-01-15)



  JUSTIFICACIÓN DE LA TÉCNICA Y METODOLOGÍA UTILIZADA (FUNDAMENTO).
La electroforesis es una técnica para separar moléculas en función de su carga eléctrica.
Consiste en aplicar una corriente eléctrica a través de una superficie (acetato de celulosa) o una matriz porosa (gel de agarosa o de acrilamida).
La corriente se genera entre un cátodo (-) y un ánodo (+), de forma que aquellas moléculas con carga + se desplazarán hacia el cátodo, y las que tengan carga – irán hacia el ánodo. En este trayecto, se separarán en función a su carga y también según su tamaño.
La hemoglobina, al ser una proteína, tiene la propiedad de ser anfótera, es decir, puede estar cargada positivamente o negativamente según el pH del medio
Para la electroforesis, usamos un tampón del pH que nos convenga, según los componentes que queramos separar.


  IDENTIFICACIÓN DE LA MUESTRA UTILIZADA Y DE LOS CONTROLES EFECTUADOS EN ESA MUESTRA.
La muestra en esta práctica es un hemolizado.

MATERIAL UTILIZADO.

MATERIAL ADICIONAL


-   Tubos de centrífuga.
-   Pipetas Pasteur.
-   Pipetas graduadas.
-   Centrífuga.
-   Espectrofotómetro.
-   Cubetas de espectrofotómetro.
-   Vidrio de reloj.
-   Bateas.
-   Probetas de 100 ml de capacidad.
-   Placa de vidrio.
-   Estufa.
-   Reloj.
-   Fuente de alimentación.
-   Cubeta.
-   Puente.
-   Aplicador.
-   Medio de soporte.
-   Fotodensitómetro.



REACTIVOS
-        Suero fisiológico. (solución de cloruro sódico al 0,9%)
-        Agua destilada o desionizada.
-        Cloroformo o triclorometano (Cl3CH).
-        Tampón: es el líquido que ioniza las proteínas.
-        Colorante, para poner de manifiesto las bandas formadas.
-        Decolorante para eliminar el exceso de colorante.
-        Deshidratante (metanol)
-        Solución transparentadora.

 SECUENCIACIÓN Y PROCEDIMIENTO SEGUIDO (TÉCNICA).
1º) PREPARACIÓN DEL HEMOLIZADO
      4 lavados  + hemólisis con cloroformo
      Aplicación de la muestra
      Separación electroforética: 400V 5’
3º)  PROCESAMIENTO DE LAS TIRAS 
    • Negro amido 10 minutos
    • Aciso acetico 10 minutos
    • Metanol 1 minuto
    • Solucion transparentadora 10 minutos

 
DESCRIPCIÓN Y REGISTRO DE LOS RESULTADOS OBTENIDOS CON EVALUACIÓN PERSONAL DEL ALUMNO DE LOS MISMO RESULTADOS.
Para la lectura de las bandas presentes en las tiras, se suele proceder al transparentado de las mismas, que se realiza de la siguiente manera:
1.      Deshidratar las tiras, sumergiéndolas en metanol durante 1 minuto.
2.      Sumergir las tiras en una mezcla de soluciones transparentadoras preparada recientemente.
3.      Extender las tiras sobre una placa de vidrio, de forma que su cara absorbente quede en contacto con el cristal y procurando que no se formen burbujas de aire al hacerlo.
4.      Calentar la placa en una estufa a unos 60-70 ºC, hasta que la transparencia de las tiras sea completa.
5.      Dejar enfriar la placa, a temperatura ambiente, durante unos minutos.
6.      Desprender las tiras de la placa.
Los resultados de la prueba pueden apreciarse vialmente o fotodensitométricamente.
La observación visual de las tiras transparentadas permite detectar la presencia de bandas anómalas o de alteraciones (ausencia, adelgazamiento o engrosamiento) en las bandas normales.
La lectura fotodensitométrica de las bandas comienza con un barrido de la tira con un haz de luz a 520 nm, seguido de una medición de la absorbancia de cada banda, a esa longitud de onda, que es registrada gráficamente en forma de curvas.
El fotodensitómetro también evalúa el área que corresponde a cada curva y proporciona el porcentaje que representa cada una de ellas con respecto al total de las áreas. Como las áreas son directamente proporcionales a la absorbancia producida, y ésta lo es a su vez a la cantidad de Hb presente en las bandas, estos porcentajes expresan la cantidad existente de lo que estamos ensayando.

APLICACIÓN DEL CONTROL DE CALIDAD.
Seguir los pasos adecuadamente de la técnica y asegurarse de que todo el material está en perfectas condiciones.

 NORMAS DE SEGURIDAD Y DE PREVENCIÓN DE RIESGOS LABORALES ESPECÍFICOS DE LA TÉCNICA.
1.      Uso de guantes y bata en el laboratorio.
2.      Llevar el pelo recogido si se tiene largo.
3.      No comer, beber o fumar en el laboratorio.
4.      Uso correcto de los reactivos.
5.      Lugar de trabajo limpio y ordenado.
6.      Tomar medidas de prevención ante riesgos de quemaduras.


CUIDADO DEL MEDIOAMBIENTE.
Dado que se utiliza bastante cantidad de reactivos, las mezclas y demás líquidos utilizados habría que desecharlos en la garrafa destinada a residuos.

 OBSERVACIONES, COMENTARIOS Y CONCLUSIONES.
 Cuando una mezcla de moléculas ionizadas y con carga neta son colocadas  en un campo eléctrico, estas experimentan una fuerza de atracción hacia el polo que posee carga opuesta, dejando transcurrir  cierto tiempo las moléculas cargadas positivamente se desplazaran hacia el cátodo (el polo negativo) y aquellas cargadas positivamente se desplazaran hacia el ánodo (el polo positivo). 
        El movimiento de las moléculas está gobernado también por dos fuerzas adicionales; inicialmente la fricción con el solvente dificultará  este movimiento originando una fuerza que se opone , por otro lado  las moléculas tienen que moverse en forma aleatoria o movimiento browniano debido a que poseen energía  cinética propia denominado  difusión.  La energía cinética de las moléculas aumenta con la temperatura, por ello a mayor temperatura mayor difusión.
 
      La suma de todas estas fuerzas provoca que las moléculas no migren de una manera homogénea, de tal manera que, si las moléculas son colocadas en un cierto lugar de solución, los iones comenzaran a moverse formando un frente cuya anchura aumentara con el tiempo.
 
        Para reducir la anchura de este frente podemos reducir el movimiento de las moléculas empleando un medio que oponga más resistencia a dicho movimiento. Una forma común de hacer esto es formar un gel. El gel consiste de un polímero soluble de muy alto peso molecular que atrapa moléculas de agua y forma un tamiz  que dificulta el movimiento de los solutos, consecuentemente, la migración electroforética de las moléculas será más lenta, pero el ensanchamiento del frente se verá reducido también.

Hoja de trabajo
1º ¿De qué material son las tiras empleadas en esta técnica?
Son de acetato de celulosa

2º ¿Cuál es el decolorante del rojo Ponceau?
Es una solución acuosa de ácido acético al 5%.

3º ¿Cómo se llama el aparato que lee las bandas de las tiras y las transforma en curvas de área mensurable?
Fotodensitómetro.

4º. ¿En qué enfermedad aparece una banda electroforética de Hb S?
Anemia falciforme.

5º. ¿Cuál es la Hb normal más electronegativa?
La hemoglobina S
 

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