Introducción al microscopio (18 de octubre de 2014)

Justificación de la técnica y metodología utilizada

Esta practica nos es útil para empezar a manejar el microscopio

Identificación de la muestra utilizada

No procede

Material utilizado

El material que he utilizado para hacer esta practica es el siguiente:

• Papel cuadriculado
• Bolígrafo
• Portaobjetos
• Cinta adhesiva transparente
• Microscopio

Secuenciación y procedimiento seguido

1. Recortar un trozo de papel cuadriculado de manera que tenga la forma y el tamaño de un portaobjetos
2. Dibujar en la mitad del trozo de papel un signo mas (+) con dos trazos de cuatro cuadrados cada uno
3. Escribir una D pequeña en el extremo derecho del signo mas
4. Escribir las letras IZ pequeñas en el extremo izquierdo del signo mas
5. Escribir las letras SP pequeñas en el extremo superior del signo mas
6. Escribir las letras IN pequeñas en el extremo inferior del signo mas
7. Fijar el trozo de papel al portaobjetos mediante una tira de cinta adhesiva de manera que el signo mas quede hacia fuera
8. Situar el portaobjetos, con la tira de papel hacia arriba, en la platina del microscopio

Descripción y registro de los resultados obtenidos

Desplazar el campo microscópico hacia la derecha, hasta visualizar unas letras. ¿Qué letras son las visualizadas?
Se visualizan las letras IZ

Desplazar el campo microscópico hacia la izquierda, hasta visualizar otra letra. ¿Qué letra es la visualizada?
Se visualiza la letra D

Volvemos a la zona central y desplazamos el campo microscópico hacia arriba, hasta visualizar unas letras. ¿Qué letras son las visualizadas?
Se visualizan las letras IN

Desplazamos el campo microscópico hacia abajo, hasta visualizar otras letras. ¿Qué letras son las visualizadas?
Se visualizan las letras SP

¿Qué consecuencia se extrae de los resultados obtenidos?
La consecuencia que se extrae de los resultados es que al mirar por el microscopio vemos las letras invertidas, como si fuera un espejo.

Anotar resultados obtenidos en el siguiente cuadro:

Letras	Coordenada longitudinal	Coordenada transversal
D	9	124
IZ	10	147
SP	2	134
IN	19	135

Aumento de los objetivos	Aumento de cada objetivo	Aumento combinado
×10	×4	×40
	×10	×100
	×40	×400
	×100	×1000

Aplicación del control de calidadNo procede

Normas de prevención de riesgos laborales

Las medidas de PRL que debemos adoptar son:

• Uso de guantes y bata
• Lugar de trabajo limpio y ordenado

Cuidado del medio ambiente

No procede

Observaciones, comentarios y conclusiones

Esta práctica es de gran utilidad para aprender a manejar el microscopio

Bloques de Prácticas

Estos son los distintos bloques en los que están distribuidas las prácticas de todo el curso:

Bloque 1. Morfología

Bloque 2. Hematimetría
Bloque 3. Coagulación
Bloque 4. Banco de sangre

Preparacion de suero salino (6 de noviembre de 2014)

Justificación de la técnica y metodología utilizada
En esta practica vamos a preparar suero salino al 0,9%

Identificación de la muestra utilizada

La muestra que hemos utilizado es agua destilada y NaCl

Material utilizado
El material que he utilizado para hacer esta practica es el siguiente:

• Vidrio de reloj
• Varilla agitadora
• Cucharilla
• Matraz aforado
• Vaso de precipitado
• Pipeta Pasteur
• Pipeta graduada
• Pre pipeta de cremallera
• Frasco lavador
• Embudo 
• Balanza

Secuenciación y procedimiento seguido

1. Primero se deben hacer los siguientes cálculos, ya que en el enunciado de la practica te dice que debes hacer: 1º Suero salino a 5M en 100 ml y 2º Suero salino a 0,9% Los cálculos son los siguientes:

   
2. Una vez realizados los cálculos procedemos a pesar 58,5 gramos de NaCl en la balanza con la ayuda de una cucharilla
3. Una vez pesada se echara un poco de agua destilada en un vaso de precipitado de 100 ml y se disolverá el NaCl con ayuda de una varilla agitadora
4. Una vez disuelto lo echaremos a un matraz aforado de 100 ml con la ayuda de un embudo y añadiremos agua destilada con la ayuda de un frasco lavador hasta que este próximo a la línea de aforo y enrasaremos con una pipeta Pasteur
5. Tapamos con Parafilm y movemos con cuidado
6. Echamos la disolución de ese matraz aforado a un vaso de precipitado
7. Ponemos la pre pipeta de cremallera en la pipeta graduada y cogemos con la pipeta el liquido que hemos trasvasado del matraz aforado al vaso de precipitado
8. Enrasamos a cero la pipeta y echamos 3 ml de esa disolución en un matraz aforado de 100 ml le hemos añadido agua destilada con la ayuda de un frasco lavador y hemos enrasado con una pipeta
9. Por ultimo le ponemos Parafilm y lo agitamos con cuidado

Descripción y registro de los resultados obtenidos

Al hacer la práctica no hemos podido disolver el NaCl en el agua destilada porque no lo hemos machacado con el mortero y se nos a quedado una disolución sobresaturada.

Aplicación del control de calidad
Para aplicar el control de calidad a esta practica debemos comprobar que los cálculos estén ben hechos y asegurarnos de que hemos pesado bien para eso debemos pesar varias veces en la misma balanza o pesar varias veces la misma cantidad en distintas balanzas.

Normas de prevención de riesgos laborales

Las medidas de PRL que debemos adoptar son:

• Uso de bata y guantes
• Lugar de trabajo limpio y ordenado
• No pipetear con la boca
• Frascos utilizados bien etiquetados, cerrados y guardados tras su uso

Cuidado del medio ambiente

Puesto que no son solutos o sustancias contaminantes para el medioambiente, una vez hechas las disoluciones se pueden desechar por el lavabo.

Observaciones, comentarios y conclusiones

Esta práctica es muy útil ya que el suero salino es necesario para hacer algunas de las prácticas que haremos después.  

Uso de la pipeta (10 de octubre de 2014)

Justificación de la técnica y metodología utilizada

Esta práctica se realiza para aprender a usar una pipeta

Identificación de la muestra utilizada

En esta práctica la muestra que utilizaremos será agua destilada

Material utilizado

El material que he utilizado para hacer esta práctica es el siguiente:

• Pipeta graduada
• Pre pipeta de cremallera
• Vaso de precipitado

Secuenciación y procedimiento seguido

1. Colocamos la pre pipeta en el extremo superior de la pipeta
2. Añadimos agua destilada en el vaso de precipitado
3. Con la mano derecha cogemos la pre pipeta que esta unida a la pipeta y con la mano izquierda cogemos el vaso de precipitado
4. Giramos la ruleta de la pre pipeta para absorber agua con la pipeta y enrasamos a cero
5. Una vez enrasado a cero soltamos en agua con cuidado y con ayuda de la pre pipeta hasta la cantidad deseada que necesitemos.
6. En otro vaso de precipitado vacío soltamos el agua restante de la pipeta

 

Descripción y registro de los resultados obtenidos

Como resultado de esta practica tendremos en una vaso de precipitado una cantidad exacta de agua destilada.

Aplicación del control de calidad

Para aplicar el control de calidad debemos realizar la práctica una segunda vez para comprobar que lo que hemos medido de agua destilada es lo correcto.

Normas de prevención de riesgos laborales

• Uso de bata y guantes
• No aspirar nunca el liquido de la pipeta con la boca
• Lugar de trabajo limpio y adecuado 
• Frascos utilizados bien etiquetados, cerrados y guardados tras su uso

Cuidado del medio ambiente

Puesto que no son solutos o sustancias contaminantes para el medioambiente, una vez hechas las disoluciones se pueden desechar por el lavabo.

Observaciones, comentarios y conclusiones

Esta práctica es de gran ayuda para aprender a utilizar la pipeta.

Uso de la bureta (10 de octubre de 2014)

Justificación de la técnica y metodología utilizada

Esta practica la hemos realizado para aprender a manejar una bureta

Identificación de la muestra utilizada

La muestra que hemos utilizado es agua destilada

Material utilizado

El material que he utilizado para hacer esta practica es el siguiente:

• Bureta
• Pie universal
• Vaso de precipitado

Secuenciación y procedimiento seguido

1. Colocar la bureta en el soporte y unir la bureta al soporte con la nuez
2. Poner un vaso de precipitado debajo de la bureta
3. Cerrar la llave de la bureta y llenar con una disolución la bureta
4. Enrasar la bureta a cero y echar la cantidad del liquido que se nos diga en el vaso de precipitado.

Descripción y registro de los resultados obtenidos

La bureta es utilizada para hacer que dos líquidos reaccionen, pero nosotros solo la hemos utilizado con agua destilada con lo que no tendremos esa reacción al utilizarla.

Aplicación del control de calidad

Para aplicar el control de calidad en esta practica debemos comprobar que a bureta este en buen estado y realizar la practica varias veces para comprobar que lo que hemos medido sea lo exacto.

Normas de prevención de riesgos laborales

Las medidas de PRL que debemos adoptar son:

1.      Lugar de trabajo limpio y adecuado.

2.      Frascos utilizados bien etiquetados, cerrados y guardados tras su uso.

3.      Uso de guantes y bata

 

Cuidado del medio ambiente

Puesto que no son solutos o sustancias contaminantes para el medioambiente, una vez hechas las disoluciones se pueden desechar por el lavabo.

Observaciones, comentarios y conclusiones

Esta practica es de gran ayuda para aprender a utilizar la bureta.

 

Disolución de NaCl (13 de octubre de 2014)

Justificación de la técnica y metodología utilizada

Esta práctica la hemos hecho para aprender a hacer una disolución, hemos disuelto 5 gramos de NaCl en 250 ml de agua destilada.

Identificación de la muestra utilizada
En esta práctica la muestra utilizada es agua y NaCl

Material Utilizado

 

El material que he utilizado para hacer esta practica es el siguiente:

• Vidrio de reloj
• Varilla agitadora
• Cucharilla
• Matraz aforado
• Embudo
• Balanza
• Vaso de precipitados
• Parafilm
• Frasco lavador
• Pipeta Pasteur de plástico

Secuenciación y procedimiento seguido

 

1. Cogemos el vidrio de reloj lo ponemos encima de la balanza encendida y le damos a tarar y vamos echando poco a poco con ayuda de una cucharilla 5 gramos de NaCl
2. Echamos un poco de agua destilada en un vaso de precipitado de 100 ml, le añadimos el NaCl y disolvemos bien con la ayuda de la varilla agitadora.
3. Ponemos el embudo en el matraz aforado de 250 ml y añadimos el contenido del vaso de precipitados.
4. Retiramos el embudo y añadimos agua destilada con la ayuda de un frasco lavador hasta que quede poco para la línea de aforo
5. Enrasamos con la ayuda de una pipeta Pasteur
6. Ponemos Parafilm en el matraz aforado y movemos con cuidado

Descripción y registro de los resultados

El resultado obtenido de esa practica es una disolución de NaCl en agua destilada

Aplicación del control de calidad

Se debe aplicar un control de calidad en la pesada y la medición con el matraz.En cuanto a la pesada, debemos comprobar que la balanza esté limpia y calibrada a 0. Después, se ha de tarar de nuevo con el vidrio de reloj o el frasco donde esté el soluto a pesar para que la medida que nos dé después, sea la que se desea, la más aproximada a la real. Hay que realizar la pesada varias veces o en distintas balanzas y, una vez que terminamos, debemos de volver a dejar la balanza limpia y tarada a 0 para la próxima medición o pesada. si no se van a hacer más, hay que dejarla apagada.En lo que se refiere a las mediciones en matraz, tenemos que comprobar que el menisco queda en la línea de la medida que queremos. Es decir, la curva que hace el líquido que queremos coger ha de quedar por encima de la línea.Para terminar de enrasar bien el matraz, tenemos que hacerlo con una Pipeta Pasteur, quitando el embudo que hemos utilizado para trasvasar el líquido y sin tocar la pared del cuello del matraz.

Normas de prevención de riesgos laborales

Las medidas de PRL que debemos adoptar son:

1.      Lugar de trabajo limpio y adecuado.

2.      Frascos utilizados bien etiquetados, cerrados y guardados tras su uso

3.      Uso de guantes y bata.

Cuidado del medio ambiente

Puesto que no son solutos o sustancias contaminantes para el medioambiente, una vez hechas las disoluciones se pueden desechar por el lavabo.

Observaciones, comentarios y conclusiones

Se comprueba lo descrito en el fundamento de la práctica

Estudio de células epidérmicas de la cebolla (20 de Octubre de 2014)

Justificación de la técnica y metodología utilizada

 

Esta practica nos sirve para ver las células epidérmicas de la cebolla y los nucleos de esas células.

 

Identificación de la muestra utilizada y de los controles efectuados a esa muestra

En esta practica la muestra es una cebolla

Material utilizado

El material que he utilizado para hacer la practica es el siguiente:

• Pinzas
• Portaobjetos
• Cubreobjetos
• Cuchillo
• Pipeta Pasteur
• Vidrio de reloj
• Vaso de precipitado

El reactivo que he utilizado para teñir la practica son:

• Azul de metileno

Secuenciación y procedimiento seguido

1. Partir la cebolla por la mitad en dos partes
2. mediante un cuchillo y unas pinzas coger una parte fina de epidermis de la zona cóncava de la tercera o cuarta escama de la cebolla
3. Echar azul de metileno en un vidrio de reloj mediante una pipeta pasteur de plastico
4. Colocar la epidermis de la cebolla que hemos obtenido en el vidrio de reloj y dejar cinco minutos para que se coloreen las celulas
5. Sacar la epidermis de la cebolla y quitar el colorante sobrante metiendo esa epidermis en un vaso de precipitado con agua destilada
6. Coger la epidermis con la ayuda de unas pinzas y colocar extendida en un portaobjetos
7. Poner cubreobjetos con cuidado encima de la muestra
8. Mirar al microscopio

Descripción y registro de los resultados obtenidos

A través del microcopio he observado los nucleos de las células de la epidermis de la cebolla y aparecen como un puntito azul dentro de la célula

Aplicación del control de calidad

Para un control de calidad en esta practica debemos hacerla de nuevo y comprobar que el resultado es el mismo

Normas de prevención de riesgos laborales

• Uso de bata
• Uso de guantes
• Llevar el pelo recogido
• No comer, beber o fumar en el laboratorio
• Lugar de trabajo limpio y ordenado
• Desechar colorante sobrante para la tinción en un contenedor adecuado

Cuidado del medio ambiente
Hay que desechar el colorante sobrante que hemos utilizado para teñir la muestra a un contenedor adecuado para colorante

Observaciones, comentarios y conclusiones

Con el azul de metileno que teñimos la muestra podemos ver los nucleos de las células, si la tinción se ve demasiado oscura es que ha estado demasiado tiempo la muestra sumergida en el colorante y si se ve demasiado clara es que ha estado un tiempo insuficiente sumergida en el colorante.

Estudio de células bucales (20 de octubre de 2014)

Justificación de la técnica y metodología utilizada

Con esta practica podemos ver las células de la boca y el núcleo de dichas células

Identificación de la muestra utilizada y de los controles efectuados a esa muestra

La muestra que hemos utilizado en esta practica es saliva

Material utilizado

El material que he utilizado para hacer la practica es el siguiente:

• Portaobjetos
• Pinzas de madera
• Pipeta Pasteur de plástico
• Palillos de madera
• Mechero Bunsen
• Cristalizador
• Puente de tinción

El reactivo que he utilizado para teñir la practica es:

• Azul de metileno

Secuenciación y procedimiento seguido

1. Enjuagar la boca con agua
2. Con una palillo de madera frotar una pared de la boca
3. Extender la saliva del palillo en un porta
4. Para fijar la muestra coger el porta con unas pinzas de madera y pasar por la llama de un mechero bunsen
5. Teñir la muestra echando gotas, con ayuda de una pipeta Pasteur de plástico, con azul de metileno, en un cristalizador
6. Dejar que se seque la muestra
7. Retirar el colorante sobrante echándole agua destilada con cuidado a la muestra
8. Secar dejando que el papel empape el agua, no se puede secar arrastrando porque contaminaríamos la muestra y porque la destruiríamos
9. Observar la muestra al microscopio

Descripción y registro de los resultados obtenidos

 En esta practica he podido ver las células de la pared bucal y he podido distinguir sus núcleos

Aplicación del control de calidad

Para un control de calidad en esta practica debemos hacerla de nuevo y comprobar que el resultado es el mismo.

Normas de prevención de riesgos laborales

• Uso de bata
• Uso de guantes
• Llevar el pelo recogido
• No comer, beber o fumar en el laboratorio
• Lugar de trabajo limpio y ordenado
• Desechar colorante sobrante para la tinción en un contenedor adecuado.

Cuidado del medio ambiente

Hay que desechar el colorante sobrante que hemos utilizado para teñir la muestra a un contenedor adecuado para colorante

Observaciones, comentarios y conclusiones

En esta practica he podido observar muy bien las células de la pared bucal y sus núcleos, si la tinción se ve demasiado oscura es que le hemos echado demasiado colorante o no la hemos lavado bien y si se ve demasiado clara es que le hemos echado poca cantidad de colorante o que la hemos lavado demasiado.

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En este blog creare entradas de todas las prácticas que hagamos en la asignatura de hematología del grado superior de laboratorio de diagnostico clínico.