Fórmula leucocitaria (01 de Diciembre de 2014)

Justificación de la técnica y metodología utilizada
La fórmula de leucocitos o leucocitaria o recuento diferencial leucocitario (RDL )mide el porcentaje presente de cada tipo de leucocitos en el total de glóbulos blancos. 

Identificación de la muestra y de los controles efectuados
 Sangre capilar

Material utilizado

 El material que he utilizado es el siguiente:

• Lancetas
• Gasas
• Papel
• Lapiz
• Microscopio

Los reactivos que he utilizado son:

• Alcohol
• Aceite de inmersión

La muestra utilizada es:

• Sangre

Secuenciación y procedimiento seguido

1.      Extraer la sangre y preparar una extensión o frotis sanguíneo.

2.      Teñir con una tinción habitual. En este caso se ha elegido la tinción de Panóptico rápido.

3.      Preparar el microscopio con el condensador alto y el diafragma abierto.

4.      Comprobar que la preparación es buena y elegir una zona donde los hematíes no estén superpuestos y los leucocitos se encuentre uniformemente distribuidos.

5.      Enfocar la zona con el objetivo de inmersión (100 x)

6.    Observar la zona elegida haciendo un recorrido en forma de almenas

Descripción y registro de los resultados
Las células que se cuentan, pueden anotarse mediante un registrado automático de células o con lápiz y papel.

El registrador automático, consiste en un aparato con unas teclas, las cuales representa a un tipo de leucocito y hace una anotación cada vez que se presiona. Cuando el número de anotaciones llega a 100, suena una alarma.

Si el recuento se hace con lápiz y papel, se dibujan unas columnas que representan cada tipo de leucocitos y se traza una raya en la columna correspondiente cada vez que se ve un leucocito.

Cuanto mayor es el número de leucocitos contados, la determinación es más exacta. Sin embargo, en la práctica, solo se cuentan 100 leucocitos o,  como máximo, 200.

Si se encuentra un mayor número de linfocitos que de neutrófilos, en el adulto, o más de un 10% de eosinófilos o más de un 12% de monolitos, el RDL se hace contando 200 leucocitos y dividiendo luego el resultado entre 2.
Si se conoce el WDC de la sangre, se puede calcular el número de cada uno de los tipos de leucocitos que está presente en un mm³ de sangre.
Los resultados que yo he obtenido son los siguientes:
Neutrófilos cayados -> he contado 9, el porcentaje seria de 9%
Neutrófilos segmentado -> he contado 66, el porcentaje seria de 66%
Linfocitos -> he contado 12, el porcentaje seria de 12%
Eosinófilos -> he contado 1, el porcentaje seria de 1%
Basófilos -> he contado 4, el porcentaje seria de 4%

Aplicación del control de calidad
Para asegurar la calidad de los resultados, habría que elegir una muestra adecuada y realizar de forma correcta la tinción.
También hay que realizar la visualización y el recuento en, al menos, dos microscopios diferentes.

Normas de prevención de riesgos laborales

1.      Uso de guantes y bata en el laboratorio.

2.      Llevar el pelo recogido si se tiene largo.

3.      No comer, beber o fumar en el laboratorio.

4.      Lugar de trabajo limpio y ordenado.

5.      Mantener una posición corporal correcta durante la visualización de la muestra.

Cuidado del medio ambiente
Puesto que los reactivos de esta práctica son de poca cantidad, el porta utilizado se puede lavar con normalidad en el fregador.
El resto de reactivos, utilizados en la tinción, se guardan en sus cubetas correspondientes, en el armario de Hematología.

Observaciones, comentarios y conclusiones
Para poder valorar cuáles son las posibles causas de una alteración de los glóbulos blancos en los análisis de sangre, debe tenerse en cuenta el recuento total y el análisis del resto de las células sanguíneas, la respuesta a las preguntas del médico  al  paciente buscando otros signos o síntomas, así como repetir el estudio sanguíneo a las 2-4 semanas para ver la evolución.
Las alteraciones de los glóbulos blancos pueden ser de su forma  (tamaño y forma) o de su funcionamiento, sobre todo los neutrófilos y los linfocitos. En muchos casos, se trata de enfermedades hereditarias que se sospechan en pacientes con infecciones repetidas. También se producen en algunas infecciones, como la mononucleosis infecciosa, en reacciones ante algunos medicamentos, y en anemias y neoplasias.
La alteración por aumento en el número de leucocitos, se denomina leucocitosis, y según el tipo que está aumentado, se habla de neutrofilia, de linfocitosis y de eosinofilia. Se denomina  leucopenia a la  disminución en el recuento de glóbulos blancos.

Hoja de trabajo
1. ¿Con que objetivo se observan los leucocitos cuando se determina una formula leucocitaria?
Con el de 100x

2. ¿Cómo es el recorrido que se describe en la observación leucocitaria?
En almena o greca

3. ¿Cuándo se han de observar al menos 200 leucocitos?
Cuando se encuentran mas linfocitos que neutrófilos o mas del 10% de eosinófilos o mas de 12% de monocitos

4. Si de 100 leucocitos observados, 20 son linfocitos y el WBC es igual a 7000 leucocitos/mm3 de sangre, ¿Cuál es el numero de linfocitos que hay en 1mm3 de sangre?

             7000x20
nº TL = ------------ = 1400 linfocitos/mm3 de sangre
                 100
5. ¿Cómo se llama el aumento de los monocitos?
Monocitosis

 

Detección de cuerpos de Heinz (28 de Noviembre de 2014)

Justificación de la técnica y metodología utilizada
Los cuerpos de Heinz son precipitados de Hb y consisten en una serie de pequeñas granulaciones que se sitúan en la periferia de los hematíes.
Los precipitados intraeritrocitarios de hemoglobina desnaturalizada se tiñen con el cristal violeta y adquieren el aspecto de pequeñas granulaciones que reciben el nombre de cuerpos de Heinz.
Se producen en enfermedades congénitas que comportan una inestabilidad de la hemoglobina, que hace que ésta se desnaturalice y precipite en presencia de algunos medicamentos, como, por ejemplo, de sulfamidas.

Identificacion de la muestra y de los controles efectuados
Sangre capilar

Material utilizado
El materia que he utilizado para realizar esta practica es:

• Lancetas
• Gasas
• Tubos de ensayo
• Pipeta Pasteur
• Pipeta automática
• Baño de agua
• Microscopio

Los reactivos que he utilizado son:

• Alcohol
• Solución cristal violeta
• Aceite de inmersión

La muestra utilizada es:

• Sangre

Secuenciación y procedimiento seguido

1.      Mezclar en un tubo de ensayo, volúmenes iguales de la solución de cristal violeta y de la sangre problema, por ejemplo, 1 ml de colorante y 1 ml de muestra

2.      Incubar la mezcla, a 37 °C, durante 5 minutos.

3.      Hacer una extensión fina de la mezcla.

4.      Dejar secar la extensión.

5.      Observar la extensión con el microscopio, utilizando para ello el objetivo de inversión.

Descripción y registro de los resultados
Los cuerpos de Heinz, una vez teñidos, se observan como pequeñas granulaciones de color púrpura que se localizan en la periferia de los hematíes
La presencia de cuerpos de Heinz en el interior de los eritrocitos y, por lo tanto, el hallazgo de precipitados de hemoglobina, se encuentra en una serie de defectos congénitos de ésta, que conllevan una alteración en el enlace hemoglobina
Este trastorno en el enlace hemo-globina, comporta una inestabilidad de la Hb, que hace que ésta se desnaturalice en presencia de algunos medicamentos y que precipite, intracelularmente, el tetrámetro de globina.
También aparecen cuerpos de Heinz intraeritrocitarios en el déficit congénitos de glucosa-6-fosfato deshidrogenasa, por precipitación de la Hb oxidada. La oxidación de la Hb, puede producirse a causa de la actuación de diversos productos (Sulfamidas, antipalúdicos, antipiréticos, analgésicos, habas, etc...) 

Aplicación del control de calidad
Como en prácticas anteriores hay que asegurarse bien de que los microscopios a utilizar estén en buen estado, así como hacer un buen frotis para la observación. Hay que asegurarse que ésta sea lo bastante fina.
Una vez elegida la muestra válida para la observación, es conveniente llevar a cabo varias observaciones o estudio de la misma muestra en diferentes microscopios para cerciorarnos del resultado.

Normas de prevención de riesgos laborales

1.      En cuanto al cristal violeta:

-        Inflamable. Mantener alejado de fuentes de ignición. En caso de incendio pueden formarse vapores tóxicos.

-        No permitir el paso al sistema de desagües. Evitar la contaminación del suelo, aguas y desagües.

-        Recoger en seco y depositar en contenedores de residuos para su posterior eliminación de acuerdo con las normativas vigentes. Limpiar los restos con agua abundante.

-        Usar gafas apropiadas

2.      Uso de guantes y bata en el laboratorio.

3.      Llevar el pelo recogido si se tiene largo.

4.      No comer, beber o fumar en el laboratorio.

5.      Uso correcto de la centrifugadora.

6.      Lugar de trabajo limpio y ordenado.

Cuidado del medio ambiente
Cumplir con la legislación local vigente sobre protección del medio ambiente. El proveedor de los medios de protección debe especificar el tipo de protección que debe usarse para la manipulación del producto, indicando el tipo de material y, cuando proceda, el tiempo de penetración de dicho material, en relación con la cantidad y la duración de la exposición.
No permitir el paso al sistema de desagües. Evitar la contaminación del suelo, aguas y desagües.

Observaciones, comentarios y conclusiones
Representan precipitados de hemoglobina en el interior de los eritrocitos. No se encuentran con la coloración usual y para demostrarlos es necesario usar coloraciones especiales. Se ven en anemias hemolíticas causadas por deficiencia de Glucosa 6 fosfato deshidrogenasa, talasemias y por drogas como la fenacetina
Hoja de trabajo
1. ¿Cuál es el colorante para teñir los cuerpos de Heinz?
Solución cristal violeta

2. ¿De que color son los cuerpos de Heinz teñidos?
De color purpura

3. ¿Dónde se localizan los cuerpos de Heinz?
En la periferia de los hematies

Contaje de reticulocitos (27 de Noviembre de 2014)

Justificación de la técnica y metodología utilizada
Los reticulocitos son eritrocitos inmaduros que contienen, como su nombre indica, un retículo o red cromatínica formada por restos de ARN (ribosomas), mitocondrias y otros órganos celulares.
Tienen un tamaño de 8 a 9 µl de diámetro. Permanecen en médula ósea unos 2 0 4 días y después salen a sangre periférica, donde terminan el proceso de maduración en unas 24 horas.
Su cantidad en sangre periférica es un reflejo de la actividad eritropoyetina medular.
Podemos observar los reticulocitos al microscopio óptico mediante la tinción con colorantes vitales, como el azul de metileno o azul de cresil brillante. Estos colorantes dan lugar a la precipitación de los restos de ARN, y se observan cómo filamentos de color azul intenso en el interior de la célula.

Identificación de la muestra y de los controles efectuados
Sangre capilar

Material necesario
El material que he utilizado para realizar la practica es e siguiente:

• Lancetas
• Gasas
• Portaobjetos
• Tubos de hemolisis
• Pipetas Pasteur
• Baño de agua
• Microscopio

Los reactivos que he utilizado son:

• Alcohol
• Azul cresil brillante
• Aceite de inmersión

La muestra que he utilizado es:

• Sangre

Secuenciación y procedimiento seguido

1. Preparación del colorante:

a.       Mezclamos 80 ml de solución salina y 20 ml de citrato sódico al 3 %. (este paso no se  hace ya que está preparado en la mezcla)

b.      Pasamos 1 g de azul de cresil brillante y se disuelve en la mezcla anterior.

c.       Filtramos la preparación antes de usarlo

 

2. Preparar dos extensiones para la tinción de los reticulocitos:

Se trata de una tinción supravital, es decir, se hace mientras las células están aún vivas.

a.       Para ello echamos tres gotas de la solución colorante en un tubo de hemólisis y otras tres gotas de sangre total previamente homogeneizada.

b.      Mezclamos suavemente y tapamos con papel parafilm. Introducimos en el baño de agua a 37 °C durante 5 minutos.

c.       Pasado este tiempo, volvemos a homogeneizar y tomamos una gota de la suspensión para depositarla en un porta.

d.      Realizamos una extensión y dejamos secar al aire.

 

 

Descripción y registro de los resultados obtenidos
Los hematíes se habrán teñido de color verde amarillento y los reticulocitos se diferencian porque presentan en su interior unos hilos finos de color azul.
Se deben contar 2000 hematíes en total.

 

Aplicación del control de calidad

 Para realizar el recuento reticulocitario hay que asegurarse de que los reactivos o colorantes están en perfecto estado, ya que si no, pueden precipitar y formas grumos o no teñir de forma adecuada la muestra.
Se han de preparar y contar dos muestras para evitar errores en las observaciones, así como realizarlas en microscopios diferentes

Normas de seguridad y prevención de riesgos laborales

1.      Realizar el procedimiento adecuado del baño. Tener cuidados con posibles riesgos eléctricos.

2.      Uso de guantes y bata en el laboratorio.

3.      Llevar el pelo recogido si se tiene largo.

4.      No comer, beber o fumar en el laboratorio.

5.      Lugar de trabajo limpio y ordenado

6.      Limpiar correctamente los portas, dejándolos después en la solución de acetona.

Cuidado del medio ambiente

En esta práctica, los portas utilizados para preparar las muestras se pueden lavar en el grifo y tirar el líquido en la garrafa.

Observaciones, comentarios y conclusiones

La determinación de los reticulocitos permite evaluar la producción eficaz de células rojas por la médula ósea. Su utilidad real es conocer la capacidad de respuesta de la médula en aquellos casos en los cuales hay disminución de las células rojas en sangre periférica y es necesario que la médula aumente su producción para así compensar el déficit de dichas células. Esta información es de fundamental importancia en el diagnóstico de anemias por falla en la producción (anemia aplásica) y por aumento en la destrucción (anemia hemolítica) 

Hoja de trabajo

1. ¿Qué son los reticulocitos?
Son hematíes inmaduros

2. ¿Qué tipo de tinción estamos utilizando?
Una tinción vital

3. ¿Por que hacemos la corrección del porcentaje de reticulocitos?
Por que existe una anemia con disminución en la cantidad de hematíes y se compensa con un aumento en el numero de reticulocitos y debemos corregir su valor en tato por ciento para poder considerarla real.

4. ¿Qué nos expresa el IPR?
Nos da un valor numérico de la estimulación hematopoyetica por encima de la actividad de la línea base normal 

Determinación del valor hematocrito mediante el micrometodo (21 de Noviembre de 2014)

Justificación de la técnica y metodología utilizada
El HCT puede determinarse por métodos manuales o automáticos.
Los métodos normales consisten en la centrifugación de la sangre.
Los métodos automáticos pueden basarse en 2 principio:
 - El calculo matemático del HCT a partir de valores de RBC
 - El análisis de la sombra que produce la población eritrocitaria

Identificación de la muestra y metodología utilizada
Sangre capilar

Material utilizado
El material que he utilizado para esta practica es el siguiente:

• Capilares
• Lancetas
• Gasas
• Plastilina
• Regla milimetrada
• Centrifuga de hematocrito

La muestra utilizada es:

• Sangre

Secuenciación y procedimiento seguido

1. La determinación ha de hacerse por duplicado.
2. Llenar las 3/4 partes de los tubos capilares.
3. Limpiar el exterior del tubo con un algodón.
4. Sellar el extremo de cada tubo por el que ha entrado la sangre con plastilina.
5. Colocar los tubos en la centrifuga.
6. Configurar los tubos a unos 12000rpm durante 5 minutos.

Descripción y registro de los resultados obtenidos.
Medir las columnas formadas en el interior de cada tubo con una regla o con un lector de microhematocitos.

 

Aplicación del  control de calidad.
Hacer la practica dos veces.

Normas de precaución de riesgos laborales.

Las normas de prevención que debemos adoptar en esta práctica son:

-        Uso de bata y de guantes apropiados.

-        Si se tiene el pelo largo, llevarlo recogido.

-        Lavarse las manos antes y después de la práctica.

-        Los envases hay que dejarlos bien cerrados, guardados en un ambiente seco y a temperatura
         ambiente.

-        En caso de vertido accidental, recoger en seco y depositar en contenedores de residuos para su
          posterior eliminación de acuerdo con las normativas vigentes. Limpiar los restos con agua
          abundante.

-        Lavar adecuadamente la cámara de recuento.

-        Mantener el puesto de trabajo limpio y ordenado.

Cuidado del medio ambiente.
Desechar la lanceta y el capilar al contenedor biológico (contenedor amarillo)

Observaciones, comentarios y conclusiones.
Esta practica es muy útil para averiguar si tienes anemia

Hoja de trabajo
1. ¿Qué significa la franja roja que contienen algunos capilares?
Que contienen heparina

2. ¿A que fuerza relativa de centrifugación se centrifuga la sangre?
A 1200 rpm

3. Si la medida de la columna de eritrocitos es de 20 mm y la de la columna total es de 50 mm ¿Cuál es el valor del hematocrito?
50 - 100
20 - X        X = 20x100/50 = 40%

Si con un capilar se obtiene un HCT de 45 y con otro uno de 43 ¿Cómo debe ser la forma de actuar entre los resultados?
Hay que hacer la media

 

	E	T	HCT – RM	HCT - L
Primer tubo capilar	1,7	5,5	30,91	31
Segundo tubo capilar	1,7	5,5	30,91	31

Recuento de hematies (20 de Noviembre de 2014)

Justificación de la técnica y metodología utilizada
El recuento de hematíes o RBC (Red Blood Count) consiste en una determinación del número de eritrocitos presentes en un volumen determinado de sangre, generalmente en un mm³ o µl
Para el conteo de eritrocitos, se usan métodos sistemáticos que son más rápidos y precisos, y los métodos manuales.
Todo método manual de recuento celular incluye 3 fases:

·         Dilución de la sangre

·         Muestreo de la sangre diluida en un volumen

·         Recuento de células en ese volumen

Una suspensión celular se caracteriza por presentar un número de partículas microscópicas dispersas en un fluido. Habitualmente será necesario determinar tanto la densidad de las células en la suspensión como el porcentaje de éstas que son viables. Para determinar la densidad de las células se emplean diferentes técnicas, desde la relativamente simple cámara de contaje celular de la que existen numerosas variantes, entre ellas la que utiliza la cámara de Neubauer
Para el conteo de eritrocitos, es necesario diluir la sangre con el líquido de Hayem, en una proporción exacta. Luego se examina en el microscopio con una cantidad pequeña colocada en la cámara de Neubauer, contando el número de elementos que se encuentran en el retículo de la cámara y mediante una operación se obtiene el número total.

Identificación de la muestra utilizada y de los controles efectuados
Sangre venosa anticoagulada

Material utilizado

El material que he utilizado para esta practica es el siguiente:

• Cámara de Neubauer
• Pipeta diluidora de Thoma
• Tubo de goma con boquilla de glóbulos rojos
• Prepipeta de cremallera
• Un cubreobjetos
• Un microscopio

Los reactivos utilizados son:

• Liquido de Hayem

La muestra utilizada es:

• Sangre

Secuenciación y procedimiento seguido

1. Situar el cubre sobre la cámara
2. Aspirar despacio la sangre hasta la señal de 1
3. Limpiar cuidadosamente el exterior de la pipeta con un algodón
4. Aspirar liquido de Hayem hasta la señal de 101
5. Desenganchar el tubo de goma de la pipeta y homogeneizar
6. Desechar las tres primeras gotas emitidas por la pipeta
7. Depositar la siguiente gota entre la cámara y el cubre
8. Dejar reposar la sangre diluida durante unos minutos
9. Enfocar el retículo con el objetivo de 40x

Descripción y registro de los resultados obtenidos
Para hallar el recuento de hematíes se utiliza la siguiente formula: RBC = Hx5x10xD
H = Hematíes contados en 5 cuadrados obtenidos
D = Factor de dilución
Yo he contado un total de 383 hematíes en los cinco cuadrados, asi que la formula seria:
RBC = 383x5x10x100 = 1915000 millones/mm3
Se considera normal un RBC comprendido entre los 4 y los 5,5 millines/mm3 en las mujeres y entre los 4,5 y los 6 millones/mm3 en los hombres

Aplicación del control de calidad
En la observación al microscopio de la muestra, esta debemos realizarla en varios microscopios para compararla y poder validarla. Debemos comprobar el buen funcionamiento de cada uno de los microscopios que se utilicen y manejarlos correctamente, siguiendo el protocolo de utilización

 

Normas de prevención de riesgos laborales

Las normas de prevención que debemos adoptar en esta práctica son:

-        Uso de bata y de guantes apropiados.

-        Si se tiene el pelo largo, llevarlo recogido.

-        Lavarse las manos antes y después de la práctica.

-        Los envases hay que dejarlos bien cerrados, guardados en un ambiente seco y a temperatura
         ambiente.

-        En caso de vertido accidental, recoger en seco y depositar en contenedores de residuos para su
          posterior eliminación de acuerdo con las normativas vigentes. Limpiar los restos con agua
          abundante.

-        Lavar adecuadamente la cámara de recuento.

-        Mantener el puesto de trabajo limpio y ordenado.

Cuidado del medio ambiente
 Desechar el cubreobjetos al contenedor biológico (contenedor amarillo)

Observaciones, comentarios y conclusiones
Hay algunas cámaras de Neubauer muy rayadas y en las que no se ve nada.
Se ven mejor los hematíes en una cámara de campo oscuro

Hoja de trabajo
1. ¿Qué se debe de hacer si el liquido de hayem contiene precipitados?
Se debe colar con la ayuda de un papel de filtro

2. ¿Cuál es el volumen de sangre diluida que hay sobre cada uno de los cuadrados pequeños donde se han contado los hematíes?
0,005x0,005x0,1 = 0,0000025

Visualización de una camara de recuento (20 de Noviembre de 2014)

Justificación de la técnica y metodología utilizada
El fin de esta práctica es conocer una cámara de recuento

Identificación de la muestra utilizada
No procede

Material utilizado

El material que he utilizado para esta practica es:

• Cámara de recuento
• Microscopio

Secuenciación y procedimiento seguido

1. Observar la cámara de recuento con el objetivo de pequeño aumento (4x)
2. Observar la cámara de recuento con el objetivo de mediano aumento (10x)
3. Observar la cámara de recuento con el objetivo de gran aumento (40x)
4. Enfocar con el objetivo de 10x y contar el numero de cuadrados medianos.
5. Teniendo en cuenta que la longitud de cada uno de los lados es de 3 mm calcula:
   - La longitud de los lados de cada cuadrado grande periférico: 1 mm
   - La longitud de los lados de cada uno de los cuadrados medianos englobados en un cuadrado grande periférico: 0,25 mm
6. Teniendo en cuenta que la longitud del espacio comprendido entre el retículo y el cubre es de 0,1 mm calcular el volumen de sangre diluida que hay en la cámara de recuento montada:
   - El retículo entero: 0,1x3x3=0,9 mm
   - El cuadrado grande periférico: 0,1 mm
   - Un cuadrado mediano incluido en el cuadrado grande periférico: 0,025 mm
7. Enfocar con el objetivo de 10x el cuadrado grande central:
   - Contar el numero de cuadrados medianos contenidos en ese cuadrado grande central: 25 cuadrados
   - Contar el numero de cuadrados pequeños englobados en uno de esos cuadrados medianos: 16 cuadrados
8. Teniendo en cuenta que la longitud de cada uno de los lados del retículo es de 3 mm calcula:
   - La longitud de los lados del cuadrado grande central: 1 mm
   - La longitud de los lados de cada uno de los cuadrados medianos incluidos en el cuadrado grande central: 0,2 mm
   - La longitud de los lados de cada uno de los cuadrados pequeños contenidos en uno de esos cuadrados medianos: 0,005 mm
9. Teniendo en cuenta que la longitud del espacio comprendido entre el retículo y el cubre es de 0,1 mm, calcula el volumen de sangre diluida que hay en la cámara:
   - El cuadrado grande central: 0,1 mm
   - Un cuadrado mediano englobado en el cuadrado grande central: 0,02 mm
   - Un cuadrado pequeño incluido en uno de esos cuadrados medianos: 5x10 ^-2

Descripción y registro de los resultados obtenidos

 

Aplicación del control de calidad
No procede

Normas de prevención de riesgos laborales

1.      Uso de guantes y bata en el laboratorio.

2.      Llevar el pelo recogido si se tiene largo.

3.      No comer, beber o fumar en el laboratorio.

4.      Posición postural correcta durante la observación para evitar dolencias en un futuro.

             5.    Puesto de trabajo limpio y ordenado

Cuidado del medio ambiente
No procede

Observaciones, comentarios y conclusiones
Se trata de una gruesa placa de cristal con forma de portaobjetos, de unos 30 x 70 mm y unos 4 mm de grosor.
En una cámara simple, la porción central, que es donde se realiza el conteo, está dividida en 3 partes. En la parte central se encuentra grabada una retícula cuadrangular.
En el caso de cámara dobles, que son las más comunes, existen 2 zonas de conteo, una superior y otra inferior al eje longitudinal de la cámara.
La retícula completa mide 3 mm x 3 mm de lado. Subdividida a su vez en 9 cuadrados de 1mm de lado cada uno.
En caso de recuento de sangre, los cuadrados de las esquinas son los destinados al recuento de leucocitos. Al existir estos en menor número que los hematíes, se necesitan menos líneas de referencia para realizar el conteo.
El cuadrado central es el destinado al recuento de hematíes y plaquetas. Se divide en 25 cuadrados medianos de 0,2 mm de lado, y cada uno de estos cuadros se subdivide a su vez en 16 cuadrados pequeños.
El cuadrado central está por tanto formado por 400 cuadrados pequeños